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外周血淋巴细胞分离管

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耐思生命科技
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使用方法/ Instructions

前期准备

1)将分离液的温度平衡至室温(RT),避光。

2)将分离液用移液管从分离管嵌套的中心孔中加入:15ml的分离管需要加入约4ml分离液;50ml的分离管需要加入约13ml分离液,确保分离液覆盖嵌套上方。

3)平衡至室温后的分离管就可以加入抽取的抗凝血和骨髓了。虽然加入稀释标本的生理盐水不是十分必要,但是它能帮助提高分离效果。

分离过程

加入细胞分离液                                   加入样本                             离心后分层          收集富集细胞、重复洗涤

1)将抗凝样本(血或骨髓,如果需要可以用生理盐水稀释)延管壁缓慢倒入或用移液管延管壁缓慢加入到分离管中:如果用15ml的分离管建议使用4-9ml样本;如果用50ml的分离管建议使用13-30ml样本。

2)室温下离心,离心力为1200 x g需要10分钟,关闭离心机。对于放置24h以上的样品,建议离心时间加长。

3)离心后液体分离情况(从上到下)为:a血浆 ;b富集的细胞部分(中间相包含淋巴细胞/PBMCs细胞);c分离液;d嵌套;e沉淀(红细胞和粒细胞)。采集或丢弃富集细胞所在层以上5到10mm的血浆层有助于防止富集细胞被血小板再次污染。

4)收获富集细胞(淋巴细胞/PBMCs细胞),将分离管中上清倒入另一干净离心管中,分离管中的嵌套能有效避免富集细胞被红细胞和粒细胞再次污染。建议不要将分离管倒置2s以上。

5)用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤富集细胞(淋巴细胞/PBMCs细胞),然后在250 x g离心力下离心10分钟。

6)按步骤5重复洗涤2次,最后用5ml PBS缓冲液重新悬浮细胞。

注意事项/ Cautions

1)本产品应由经过专业培训的人员操作,并遵守良好的实验室规范。

2)请勿重复使用分离管。

3)由于各品牌离心机的性能不同,地区温度环境差异,可能影响分离效果,用户可以调节离心转速和离心的时间,摸索最佳的分离条件(具体分离条件由各实验室自定)。

4)可用于人类外周血、骨髓和脐带血样本。它不适用于白细胞分离样本、血沉棕黄层样本或超过48小时的样本。

5)离心后,细胞可能聚集在富集层以上的分离管的管壁上。这种聚合是正常的,受样本质量、样本放置时间和抗凝剂类型的影响。此聚合与分离管的使用无关。细胞可以通过使用移液管尖端刮管壁的一侧来清除。

6)处理任何生物来源的标本,使用采血针、采血管系列、相关仪器等一定要注意按严格的操作规程使用。请把标本当成可能感染 HIV、HBV、HCV等传染病的危险物质处理。为避免操作时感染的危险,请使用一次性手套。


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